细胞的信号转导依赖细胞膜上的多种受体蛋白。而在这其中,离子通道对于即时感知细胞内外信号,调节适应性变化具有关键作用。2003年,PeterAgre和RoderickMackinnon就因为发现了水通道和解释了电压门控钾通道离子选择性原理而共同获得了诺贝尔化学奖。 我们今天介绍的瞬时受体电位(Transientreceptorpotential,TRP)通道,也以其复杂的调控机制和丰富的生理功能吸引了一代又一代的科学家为之努力探索。 1hr一个意外收获 相比于我们对电压门控型离子通道的研究,对TRP通道的研究起步时间较晚。 1969年,英国爱丁堡大学动物系的D。J。Cosens和AubreyManning在黑腹果蝇上利用甲基磺酸乙酯(Ethylmethanesulfonate,EMS)作为诱变剂,通过人工诱变的方式筛选到一个突变体,该品系存在异常的趋光性和视网膜电位,持续光刺激仅引起短暂的视网膜负电位,而不是常见持续的、平台样变化,并且在第二次光照刺激来临时不能产生有效的反应〔1〕。 美国加州大学伯克利分校GeraldRubin实验室的博士后CraigMontell随后研究发现,这是由于黑腹果蝇某个类似离子通道膜蛋白的突变而导致的,因此他们率先克隆了该基因,并将该蛋白命名为瞬时受体电位(TRP)通道〔2〕。野生型TRP通道介导昆虫视觉细胞中光激活的持续平台电流。同样的通道在脊椎动物中并不存在,但是却有很多在进化上和初始的果蝇TRP通道相关的通道蛋白,形成了一个蛋白超家族。 基于果蝇的TRP是最早被发现的,所有的超家族成员也都以TRP命名并根据蛋白序列的差异分属于TRPC(Canonical)、TRPV(Vanilloid)、TRPM(Melastatin)、TRPA(Ankyrin)、TRPP(Polycystin)、TRPML(Mucolipin)以及TRPN(NOMPC)七个亚家族(图1)。其中TRPN只在无脊椎动物中发现,初始的果蝇TRP属于TRPC亚家族。 图1TRP通道亚家族〔3〕 哺乳动物TRP通道不参与视觉感受,但广泛参与了痛觉的产生与调节,其中以TRPV1为主要代表。长久以来,人们已经知道辣椒浸出液选择性激活背根神经节(Dorsalrootganglion,DRG)的伤害感受神经元,诱导其产生动作电位〔4〕,将伤害刺激传递给中枢神经系统产生痛觉。但刺激分子辣椒素是通过什么机制激活神经元的呢? 为了筛选与辣椒素结合的受体,1997年加州大学旧金山分校的DavidJulius教授带领的小组从大鼠DRG中提取了16000多种mRNA,将它们分成不同的组分,分别转入工具细胞中检测其对辣椒素的反应,成功克隆得到了辣椒素受体VR1。对VR1蛋白序列的分析表明VR1属于TRP蛋白超家族,因此被命名为TRPV1通道〔5〕。 该基因编码一个6次跨膜蛋白,通道展现出高度的钙离子通透性。TRPV1能被辣椒素特异性激活,同时也能被42以上的高温激活,从而不仅确定了辣椒素激活感觉神经元的原理,还首次将痛觉和温度感受联系在一起,揭示了人吃辣椒为什么会同时感到辣和热的分子机制。 迄今为止,已从酵母、昆虫、鱼类及哺乳动物中发现了50余种TRP通道。他们虽然同属于TRP超家族,但序列一致性不超过20,同时,通道特性也存在巨大的差异,有些TRP通道表达在质膜上,整合细胞内外信息,介导非选择性阳离子内流;有些则分布在细胞器膜上,调节胞内Ca2的释放〔6〕。想要了解通道开放机制和生理功能,解析他们的精细结构势在必行。 2hr冷冻电镜关键技术革命引爆结构解析突破 与果蝇trp基因同源性最高,也是全长最早得到解析的哺乳类TRP通道之一是TRPC3。TRPC3在神经系统和心脏中广泛表达,被二酰基甘油(diacylglycerol,DAG)等第二信使激活,感知胞浆钙库耗竭,开放介导非选择性的阳离子电流,参与生长锥导向,突触可塑性,血管收缩等多重生理过程。 2007年ChikaraSato等人合作报道了TRPC3的冷冻电镜结构,这也是第一个被解析出来的全长哺乳类TRP通道结构〔7〕。电镜结构显示,TRPC3由四个亚基组成,整个通道形成一个嵌套式的结构,由中间的球形空腔和不连续外壳构成,通道开放时离子通过孔道进入腔体,借由腔体底部四个开口流入胞内。而外壳上分隔出的不同结构域可能也参与了门控机制的精细调节。 紧随其后得到全长解析的是TRPV1通道。2013年,DavidJulius教授与和他同一机构的华人科学家程亦凡教授合作,在《自然》杂志连续发表了两篇文章,解析了全长TRPV1关闭态和开放态的结构,此为首个以冷冻电镜方法获得近3超高分辨率的膜蛋白结构,大大促进了对TRP通道分子结构的认识,并开创了一个以冷冻电镜为主要手段研究蛋白结构及蛋白与蛋白间相互作用的新时代,也侧面促进了冷冻电镜技术获得2017年诺贝尔化学奖。 图2加州大学旧金山分校教授程亦凡图源:hhmi。org 通过对TRPV1关闭态结构的分析,研究者发现该通道与电压门控离子通道具有相似的结构:TRPV1为四聚体,每个亚基具有六次跨膜螺旋结构域,其中第5和第6个跨膜结构域共同构成通道孔区,第14个跨膜结构域构成电压感受位点以及辣椒素结合位点〔8〕。而在树脂毒碱(辣椒素类似物)和蜘蛛毒素DkTx存在的情况下,可以得到TRPV1的开放态结构,通过对其开放态与关闭态结构的对比,发现TRPV1有独特的双门通道激活机制(图3)〔9〕,虽然其选择性滤器是否构成真正能控制离子流动的上闸门尚有争议〔10〕。该工作完美地阐释了辣椒素和质子两种不同配体激活下,TRPV1通道的开放原理与构象变化,但也给我们带来了新的疑问,温度介导TRP通道开放是否也具有特定的结构生物学基础呢? 图3TRPV1双门通道门控机制〔9〕 3hr春江水暖TRP知 除了被配体激活,温度敏感也是TRP家族的一个重要特征。我们把类似TRPV1这种在特定温度下开放的TRP家族成员统称为ThermoTRP。 迄今,在哺乳动物中已鉴定出11种ThermoTRP,包括热受体TRPV1TRPV4和TRPM2TRPM5,以及冷受体TRPM8、TRPC5和TRPA1。这些ThermoTRP可以感受整个生理范围内的温度,从产生痛感的灼热,到令人舒适的温暖及凉爽,再到刺骨的寒冷。 此外,ThermoTRP还可以被化学配体所激活,包括刚才提到的辣椒素,还有大蒜素、大麻素、芥末油,薄荷醇和肉桂醛等(图4)〔11〕。 图4ThermoTRP及其化学配体 研究人员充分利用各种生物物理学技术和方法,对温度如何激活ThermoTRP通道的机理进行了长期探索。温度代表着区域微观粒子的平均动能,而热传导会影响粒子排布。对于肽链和蛋白质来说,温度改变不仅会影响氨基酸残基的极性强弱,也会大程度改变蛋白质的构象。正是由于这种多模态参与的方式,阻碍了解析ThermoTRP温度激活机制的进程。同时,不同种属温度敏感性的差异,比如,大鼠rTRPV1的激活温度阈值为42,而吸血蝙蝠(Vampirebat)TRPV1的激活温度约30,更是增加了鉴定温度传感结构域的挑战性。 对于TRPV1来说,目前鉴定出参与温度门控的区域主要包括N端、C端、外孔区以及孔道区域(图5)。 位于N端的锚定重复域(Ankyrinrepeatdomain,ARD)决定了十三条纹地松鼠和双峰驼的耐热性,如果把地松鼠来源的sqTRPV1通道第190位天冬氨酸换成类似大鼠的丝氨酸,会介导sqTRPV1热敏感性增加,但不影响其辣椒素和酸诱导的化学激活〔12〕。而实验证明,连接ARD和第一个跨膜片段的N端,也被称为细胞膜近端域(Membraneproximaldomain,MPD),作为温度感受器而参与介导TRPV1温度敏感性,并决定了温度刺激下的TRPV1通道开关过程中的能量变化和温度感受特性。利用分子生物学手段将这段区域换进rTRPV2,hTRPV2或者mTRPV4等通道,不仅使温度不敏感的亚型转变为温度敏感的通道,也会使野生型通道的温度感受特性变得和TRPV1通道一样〔13〕。 此外,受内源性胞内激动剂磷脂酰肌醇(Phosphatidylinositol4,5bisphophate,PIP2)影响的通道C端的近膜区与远端,也都是感知温度刺激的重要模块〔14,15〕。将热激活的TRPV1与冷激活的TRPM8C端互换,可以交换其温度敏感性,尤其是将TRPV1Q727和W752两个氨基酸残基引入野生型TRPM8通道中,可以使其直接表现出热激活的特性,且不与PIP2激活耦联,这说明温度传感与传统配体激活依赖的机制不同〔16〕。 图5TRPV1温度敏感结构域〔8〕 有研究证明,N端和C端两个胞内区也会通过相互作用介导TRPV1的热失活〔17〕。除了胞内区,通道孔道及孔道周边也参与了温度敏感性调控,其关键位点,包括位于通道孔区的C617、C622以及位于孔区外的N628、N652、Y653,突变后均会显著影响TRPV1的温度敏感性〔18,19〕。每个物种都有最适宜的生存温度,进化压力使得TRP通道表现出了显著的种属差异,这也在侧面论证了TRP家族对于生物适应环境变化具有重要意义。 4hr以子之矛,攻子之盾 因为其多种多样的生物学功能以及灵活多变的开放机制,靶向TRP通道进行临床干预具有广泛的应用前景。 以TRPV1为例,它就是非常具有转化价值的镇痛靶点〔20〕。作为将伤害刺激转化为电信号的感受器,TRPV1通道在感觉神经末梢过度激活时,也会导致神经病理痛(图6)〔21〕。例如癌症患者化疗后有时会并发严重的外周神经痛,常规镇痛药不能完全缓解。这可能就是因为顺铂、奥沙利铂和紫杉醇等化疗药促进TRPV1的功能,引起通道表达水平升高、通道敏化及氧化应激反应,诱发机械、热和冷痛敏反应〔22〕。靶向TRP通道的药物,可有效缓解癌症患者在化疗时遭受的严重不良反应。例如,树脂毒碱可以作为分子手术刀,通过特异性激活其受体TRPV1通道,引起表达TRPV1的痛觉感受神经元发生钙内流与钙超载,进而导致这些神经元的凋亡,作为慢性癌症疼痛的控制手段〔23〕。 图6ThermoTRP与疼痛〔11〕 同时,TRP通道也是治疗呼吸系统疾病的潜在靶点,它们在肺中的免疫细胞和结构细胞中广泛表达,在引起支气管痉挛和咳嗽等呼吸系统症状中发挥核心作用〔24〕。吸入辣椒素会激活C纤维引起剧烈的咳嗽反射,而该反射的增强是哮喘、慢性阻塞性肺病、特发性肺纤维化等一系列呼吸道疾病共同的特征之一。靶向呼吸道中高表达的TRPV1、TRPA1、TRPV4、TRPM8等亚基,不仅可以增加肺通气,改善气道阻塞,也可能成为COVID19等肺部感染治疗中,减轻肺水肿〔25〕、改善呼吸窘迫、抑制病毒在宿主细胞间传递〔26〕的辅助干预策略。 除此之外,靶向TRP家族,尤其是TRPM亚家族干预神经系统疾病也具有临床转化意义。TRPM2抑制剂JNJ28583113可以显著缓解小鼠缺血性中风过程中神经元的氧化应激损伤〔27〕,而TRPM4亚基不仅通过促进N甲基D天冬氨酸受体(NmethylDasparticacidreceptor,NMDAR)膜转运,加重突触周NMDAR介导的神经元死亡〔28〕,还可以与磺酰脲受体1(Sulfonylureareceptor1,SUR1)形成复合体,增加血脑屏障通透性〔29〕,与水通道蛋白4(Aquaporin4,AQP4)形成聚合体加剧中风时星形胶质细胞的肿胀,导致更严重的神经损伤〔30〕。外源格列苯脲靶向SUR1TRPM4异聚体干预缺血性中风已经进入临床三期阶段。这进一步说明了靶向TRP通道干预中枢神经系统疾病的应用前景。 TRP通道的研究还在继续,这不仅是我们理解机体如何感知外界刺激(温度、压力、伤害刺激)的分子窗口,也是极具启发性和延续性的靶标探索史诗,其从结构到功能的研究范式对后续膜蛋白的研究产生了深远的影响。临床医学的进步与革新离不开基础科学的探索与发现,希望随着我们对TRP通道和其他膜蛋白了解的深入,能真正揭开生物进化的奥秘,产生更多有启发性和临床转化价值的研究成果。 注:本文部分内容摘自公众号《离子通道研究进展》 作者简介齐昕为上海交通大学医学院三年级博士研究生,李婕为上海交通大学医学院二年级硕士研究生,卢剑飞为上海交通大学医学院博士后。审稿人简介徐天乐为上海交通大学医学院特聘教授,朱曦为德克萨斯大学休斯敦健康医学中心教授,李海涛为清华大学医学院教授。 参考文献: 1。CosensD。J。,andManningAubrey。AbnormalElectroretinogramfromaDrosophilaMutant。Nature224,no。5216(1969):2857。 2。MontellCraig,andRubinGeraldM。MolecularCharacterizationoftheDrosophilaTrpLocus:APutativeIntegralMembraneProteinRequiredforPhototransduction。Neuron2,no。4(1989):131323。 3。FerreiraGonzalo,RaddatzNatalia,LorenzoYenisleidy,GonzlezCarlos,andLatorreRamn。BiophysicalandMolecularFeaturesofThermosensitiveTrpChannelsInvolvedinSensoryTransduction。139:SpringerInternationalPublishing,2015。 4。BaccagliniP。I。,andHoganP。G。SomeRatSensoryNeuronsinCultureExpressCharacteristicsofDifferentiatedPainSensoryCells。ProcNatlAcadSciUSA80,no。2(1983):5948。 5。CaterinaMichaelJ,SchumacherMA,TominagaMakoto,RosenTobiasA,LevineJonD,andJuliusDavidTheCapsaicinReceptor:AHeatActivatedIonChannelinthePainPathway。Nature389,no。6653(1997):81624。 6。KoivistoAriPekka,BelvisiMariaG,GaudetRachelle,andSzallasiArpad。AdvancesinTrpChannelDrugDiscovery:FromTargetValidationtoClinicalStudies。NatRevDrugDiscov(2021)。 7。MioKazuhiro,OguraToshihiko,KiyonakaShigeki,HiroakiYoko,TanimuraYukihiro,FujiyoshiYoshinori,MoriYasuo,andSatoChikara。TheTrpc3ChannelHasaLargeInternalChamberSurroundedbySignalSensingAntennas。JMolBiol367,no。2(2007):37383。 8。LiaoMaofu,CaoErhu,JuliusDavid,andChengYifan。StructureoftheTrpv1IonChannelDeterminedbyElectronCryoMicroscopy。Nature504,no。7478(2013):10712。 9。CaoErhu,LiaoMaofu,ChengYifan,andJuliusDavid。Trpv1StructuresinDistinctConformationsRevealActivationMechanisms。Nature504,no。7478(2013):1138。 10。JaraOsegueraAndres,HufferKatherineE,andSwartzKentonJ。TheIonSelectivityFilterIsNotanActivationGateinTrpv13Channels。Elife8(2019)。 11。CastilloKaren,DiazFranulicIgnacio,CananJonathan,GonzalezNiloFernando,andLatorreRamon。ThermallyActivatedTrpChannels:MolecularSensorsforTemperatureDetection。PhysBiol15,no。2(2018):021001。 12。LaursenWillemJ,SchneiderEveR,MerrimanDanaK,BagriantsevSviatoslavN,andGrachevaElenaO。LowCostFunctionalPlasticityofTrpv1SupportsHeatToleranceinSquirrelsandCamels。ProcNatlAcadSciUSA113,no。40(2016):1134247。 13。YaoJing,LiuBeiying,andQinFeng。ModularThermalSensorsinTemperatureGatedTransientReceptorPotential(Trp)Channels。ProcNatlAcadSciUSA108,no。27(2011):1110914。 14。BrauchiSebastian,OrtaGerardo,SalazarMarcelo,RosenmannEduardo,andLatorreRamon。AHotSensingColdReceptor:CTerminalDomainDeterminesThermosensationinTransientReceptorPotentialChannels。JNeurosci26,no。18(2006):483540。 15。VlachovaViktorie,TeisingerJan,SusankovaKlara,LyfenkoAlla,EttrichRudiger,andVyklickyLadislav。FunctionalRoleofCTerminalCytoplasmicTailofRatVanilloidReceptor1。JNeurosci23,no。4(2003):134050。 16。BrauchiSebastian,OrtaGerardo,MascayanoCarolina,SalazarMarcelo,RaddatzNatalia,UrbinaHector,RosenmannEduardo,GonzalezNiloFernando,andLatorreRamon。DissectionoftheComponentsforPip2ActivationandThermosensationinTrpChannels。ProcNatlAcadSciUSA104,no。24(2007):1024651。 17。LuoLei,WangYunfei,LiBowen,XuLizhen,KamauPeterMuiruri,ZhengJie,YangFan,YangShilong,andLaiRen。MolecularBasisforHeatDesensitizationofTrpv1IonChannels。NatCommun10,no。1(2019):2134。 18。YangFan,CuiYuanyuan,WangKeWei,andZhengJie。ThermosensitiveTrpChannelPoreTurretIsPartoftheTemperatureActivationPathway。ProcNatlAcadSciUSA107,no。15(2010):70838。 19。GrandlJorg,KimSungEun,UzzellValerie,BursulayaBadry,PetrusMatt,BandellMichael,andPatapoutianArdem。TemperatureInducedOpeningofTrpv1IonChannelIsStabilizedbythePoreDomain。NatNeurosci13,no。6(2010):70814。 20。SzallasiArpad,CortrightDanielN,BlumCharlesA,andEidSamerR。TheVanilloidReceptorTrpv1:10YearsfromChannelCloningtoAntagonistProofofConcept。NatRevDrugDiscov6,no。5(2007):35772。 21。PatapoutianArdem,TateSimon,andWoolfCliffordJ。TransientReceptorPotentialChannels:TargetingPainattheSource。NatRevDrugDiscov8,no。1(2009):5568。 22。NazirogluMustafa,andBraidyNady。ThermoSensitiveTrpChannels:NovelTargetsforTreatingChemotherapyInducedPeripheralPain。FrontPhysiol8(2017):1040。 23。BrownDorothyCimino。Resiniferatoxin:TheEvolutionoftheMolecularScalpelforChronicPainRelief。Pharmaceuticals(Basel)9,no。3(2016)。 24。BelvisiMariaG,andBirrellMarkA。TheEmergingRoleofTransientReceptorPotentialChannelsinChronicLungDisease。EurRespirJ50,no。2(2017)。 25。KueblerWolfgangM,JordtSvenEric,andLiedtkeWolfgangB。UrgentReconsiderationofLungEdemaasaPreventableOutcomeinCovid19:InhibitionofTrpv4RepresentsaPromisingandFeasibleApproach。AmJPhysiolLungCellMolPhysiol318,no。6(2020):L1239L43。 26。ChaoYuKai,ChangSuiYuan,andGrimmChristian。EndoLysosomalCationChannelsandInfectiousDiseases。RevPhysiolBiochemPharmacol(2020)。 27。FourgeaudLawrence,DvorakCurt,FaouziMalika,StarkusJohn,SahdeoSunil,WangQi,LordBrian,etal。PharmacologyofJnj28583113:ANovelTrpm2Antagonist。EurJPharmacol853(2019):299307。 28。YanJing,BengtsonCPeter,BuchthalBettina,HagenstonAnnaM,andBadingHilmar。CouplingofNmdaReceptorsandTrpm4GuidesDiscoveryofUnconventionalNeuroprotectants。Science370,no。6513(2020)。 29。WooSeungKyoon,KwonMinSeong,IvanovAlexander,GerzanichVolodymyr,andSimardJMarc。TheSulfonylureaReceptor1(Sur1)TransientReceptorPotentialMelastatin4(Trpm4)Channel。JBiolChem288,no。5(2013):365567。 30。GerzanichVolodymyr,WooSKyoon,VennekensRudi,TsymbalyukOrest,IvanovaSvetlana,IvanovAlexander,GengZhihua,etal。DeNovoExpressionofTrpm4InitiatesSecondaryHemorrhageinSpinalCordInjury。NatMed15,no。2(2009):18591。