如何设计引物（设计引物的方法步骤）

　　本文首发于公众号诊断科学。
　　寡核苷酸已经成为商品，其合成成本低廉，因此为每项检测评估多个正向和反向引物是可行的。我们建议每种引物有三个，从而形成九个引物组合。
　　图2选择针对艰难梭菌tcdB基因的引物。
　　A、使用BeaconDesigner（PremierBiosoft）设计了三种正向引物（CD1、3和5）和三种反向引物（CD2、4和6）。
　　B、所有九种可能的引物组合被用来重复扩增从艰难梭菌630（CP010905。2）中提取的同一区域的染色体DNA，同时使用适当的NTCs。
　　C、使用Agilent的BrilliantIIISYBRGreenmastermix（目录号600882）进行扩增和溶解曲线条件。
　　D、使用CD12（绿色）和CD54（蓝色）进行扩增，分别记录了最低和最高的Cqs。只有一个NTC记录的Cq为45。
　　E、最敏感和最不敏感的引物组合之间的Cq范围是6。2。因此，首选引物对是CD1CD2。CD54是最不理想的引物组合
　　图2显示了一个实验的结果，其中针对艰难梭菌tcdB基因（KC292190。1）的三种正向和三种反向引物进行了初步筛选，评估灵敏度（由量化周期（Cq）决定）和引物二聚体形成的潜力（由无模板对照（NTCs）的扩增决定）。
　　结果表明，引物序列的微小差异可以对检测的灵敏度产生重大影响，在这种情况下是70倍（高低Cq之差为6。19）。
　　尽管对于许多检测来说，引物的浓度可以有很大的变化而不会对PCR的性能产生明显的影响，但如果目标物的拷贝数较低或为了提高特异性，引物浓度的优化就很重要。
　　在测试了大量的检测方法后，我们观察到最差和最佳引物浓度之间的Cqs变化很大，大约5倍估计是一个工作平均值，尽管它可以大得多。
　　我们没有看到一个引物组不能被优化至少一点（2倍），但也看到有几个引物组的优化产生了巨大的差异，使灵敏度提高了100倍以上。
　　因此我们的建议是，作为验证任何新引物组的常规部分，值得进行这一额外的步骤，除非确定目标将以大量存在。
　　然而，尽管引物浓度的变化会对PCR结果产生重大影响，但引物浓度不可能是PCR实验可能成功或失败的主要原因。图3所示的结果证明了这一点，只要引物浓度保持在通常的200400nM左右的范围内，灵敏度的差异就会小于4倍。
　　图3引物浓度对qPCR测定的影响。
　　A、使用Agilent的BrilliantIIISYBRGreenmastermix（目录号600882）和引物tcdF：AGAGTTGGTAGAAAGGTGGAATTTAG和tcdR。扩增和溶解曲线条件。ACATACCACCAATTTCTTTTAATGC针对艰难梭菌630（CP010905。2）的tcdB毒素基因（HM062503。1）。引物slpAF：ATTAGTTATTATTTTGTTTTCTAAATTAT和slpAR。CCTGTTTTTGCTGCAACTACT针对艰难梭菌s层蛋白的slpA基因（AB258978。1），用于扩增从艰难梭菌630（CP010905。2）提取的染色体DNA。
　　B、扩增图和溶解曲线。如果F或R引物的最终浓度保持在100nM，则得到绿色图谱，表明至少对于该引物组来说，100nM太低了。
　　C、Cq与引物浓度的关系图，表明200和400nM的最终引物浓度之间的差别很小。
　　将引物浓度降低到100nM以下是不可取的，如图4a所示，其中一个引物的最终浓度为50nM，导致检测的灵敏度明显降低。
　　图4引物浓度对qPCR检测的明显影响。引物slpAF和slpAR针对艰难梭菌s层蛋白的slpA基因（AB258978。1），用于扩增从艰难梭菌630（CP010905。2）中提取的染色体DNA。
　　A、使用Agilent的BrilliantIIISYBRGreenmastermix（目录号600882）进行扩增和溶解曲线条件。
　　B、使用1103个目标拷贝得到的扩增图和溶解曲线（插图）。三个蓝色的扩增图是在最终浓度为50nMF引物的情况下得到的，绿色和棕色的图分别是在最终浓度为100和200nMF引物的情况下得到的。
　　C、使用1108个目标拷贝得到的扩增图和溶解曲线（插图）。
　　D、不同目标浓度之间的Cqs，用不同浓度的引物进行扩增
　　有趣的是，与图3中的例子相比，对于这个引物组，100nM的最终浓度并没有导致灵敏度的大幅下降。
　　这些结果也表明，选择太低的引物浓度会影响检测的线性。
　　图4b显示了当使用1105倍的模板时，使用相同引物浓度得到的结果。
　　除了50nM的引物浓度，对于其他所有引物浓度，两个实验条件之间的预期Cq为13。3，其中的差异要高得多（图4d）。
　　同样，结论是结果在很大程度上取决于引物，如果目的是将敏感性与准确的定量相结合，那么仔细优化引物浓度将变得很重要。
　　谢谢读完！
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