原代T细胞难转染?那是工具没选对
T细胞(Tcell、T淋巴细胞Tlymphocyte)是淋巴细胞的一种,在免疫反应中扮演着重要的角色。T细胞在胸腺内分化成熟,成熟后移居于周围淋巴组织中。随着细胞免疫治疗的日益深入,T细胞的基因工程化改造显得越来越重要。
然而,T细胞的基因操作却异常困难,普通的DNA质粒根本就转不进去,即使是病毒介导的基因转染操作,也有不少难题,主要体现在几个方面:
1常规的慢病毒,由于
T细胞膜上受体的不稳定;
非激活的T细胞本身无增殖能力;
T细胞内部有阻碍反转录的机制等原因而导致慢病毒的T细胞感染能力偏弱,需要多次重复感染,且对于实验操作的条件要求十分苛刻
2体外培养的T细胞本身十分敏感且脆弱,慢病毒感染对细胞的状态影响非常大
3T细胞是悬浮细胞,进一步增大了病毒感染的难度
遇上这样磨人的细胞怎么办?
汉恒病毒载体工程师们深切体会到了大家的痛苦
通过多次实验,研发出适用于原代T细胞基因操作的悬浮细胞专用的腺病毒(Ads)和慢病毒(hTLv)。其中Ads也非常适用感染其他悬浮细胞,如Jurkat,K562,HL60和L1210等。慢病毒hTLv适用人原代T细胞的感染还可以用来构建稳转系。
感染效果图
汉恒原代T细胞感染实例使用悬浮细胞专用腺病毒ads感染
悬浮细胞专用腺病毒Ads感染小鼠原代CD4T细胞
细胞:小鼠原代CD4T细胞
刺激方式:CD3CD28抗体和IL2激活48h
病毒:AdsGFP,11010PFUml
使用方式:MOI500
悬浮细胞专用腺病毒Ads感染人原代CD4T细胞
细胞:人原代CD4T细胞
刺激方式:CD3CD28抗体和IL2激活48h
病毒:AdsGFP,11010PFUml
使用方式:MOI100
汉恒原代T细胞感染实例使用慢病毒
原代T细胞专用病毒慢病毒感染人原代CD4T细胞
细胞:人原代CD4T细胞
刺激方式:CD3CD28抗体和IL2激活48h
病毒:hTLvGFP,1108TUml
使用方式:MOI50
上文我们了解到T细胞是很难被感染的,除了使用正确的病毒工具外,在细胞制备后想要成功感染T细胞还有两个关键步骤:细胞体外刺激、细胞感染
细胞体外刺激
1。按照小鼠或人源CD4T细胞分离kit(Thermo)说明书分离得到CD4T细胞。
2。取所需体积的PBS,按照5gml的终浓度加入AntimouseCD3e和AntimouseCD28抗体,500l孔包被NonTreated24wellplate,室温放置4h,吸掉抗体悬液,加入500l1BSA(PBS配置)室温封闭30min,封闭结束加入500lPBS洗孔一次。
注:请在分离细胞的同时准备好平板,包括后续感染所需的量。
3将分离得到的CD4T按照浓度5x105cellml重悬在完全T细胞培养基中(1640,10FBS,1penicillinstreptomycin,50Mmercaptoethanol,100UmlIL2),将细胞加入步骤2中包被处理好的平板,2ml每孔(1x106cellwell),然后放入37CO2培养箱刺激培养48h。细胞在刺激24h后体积略微增大,进入活化状态,刺激48h后可进行病毒感染。
细胞感染
1。收集活化好的CD4T细胞,400g离心5min。用T细胞培养基重悬计数备用,在收集的过程中发现有些细胞会贴壁,此为正常现象,可反复吹打至贴壁的细胞也呈悬浮状态。
2。另取一AntimouseCD3e和AntimouseCD28抗体包被好的24孔板,每孔加入25x105的细胞(若为96孔板,加入2x104细胞孔)。若考虑长期表达目的基因,按MOI50100加入汉恒生物T细胞专用慢病毒hTLvGFP,注意鼠源和人源原代T细胞所适合的慢病毒种类差别;若考虑瞬时(一周以内)表达目的基因,可按MOI5001000加入汉恒悬浮细胞专用腺病毒AdsGFP。同时加入polybrene至终浓度6gml,最终感染体积为500l,加入病毒后轻轻吹打混匀。
注:具体MOI选择可在96孔板中预实验进行梯度摸索,对于慢病毒建议使用10,30,100的梯度进行,对于腺病毒建议使用500,1000,1500的梯度进行摸索。
3。24wellplate于1000g室温离心感染90min。离心结束后将平板放入37CO2培养箱感染6h。
注:离心结束观察细胞分散状态,除非细胞全聚集在一处,否则不建议吹散细胞。
4。感染结束后取出培养板,小心吸掉感染孔中350l的培养基(70),加入1。85ml的T细胞完全培养基补足体积为2ml并吹打混匀。
5。可选步骤:病毒感染24h后,小心吸掉培养基,在同一培养皿中按照24步进行病毒复感染操作。
6。将细胞放入37CO2培养箱继续培养,23天后可观察荧光,做流式检测感染效率。正常情况下,汉恒生物提供的T细胞专用慢病毒(hTLv)和悬浮细胞专用腺病毒(Ads)感染原代T细胞的效率大于50。